УДК

DOI

Сведения об авторах

Аннотация

Повреждения сухожильно-связочного аппарата сильно ограничивают физическую активность человека. Особенно часто травмы появляются у физически здоровых людей, ведущих активный образ жизни, например у спортсменов. Для лечения подобных травм в ортопедии и травматологии прибегают к аутопластическим операциям или устанавливают протезы из синтетических или биологических материалов. Известные способы лечения, несмотря на эффективность, характеризуются и рядом серьезных недостатков, часто ограничивающих их применение, поэтому поиск новых подходов и материалов для пластики связок является актуальной задачей. На сегодняшний день протезы из биотканей приобретают все больше преимуществ перед синтетическими аналогами. Наиболее перспективным сырьем для изготовления биологических протезов связок, благодаря его доступности в необходимом количестве и оптимальному размеру, являются телячьи сухожилия сгибателей и разгибателей пальцев. Цель данной работы – получение методики обработки ксеногенного сухожилия для изготовления протеза связки и оценка его биосовместимости на модели гетеротопической имплантации. Для изготовления протеза связки сырье подвергалось механической очистке и химико-физической обработке, а также обработке сверхкритическим флюидом углекислого газа с добавлением неионогенного поверхностно-активного вещества Tween 80, что в совокупности способствовало эффективной децеллюляризации и удалению других биологически активных компонентов с сохранением при этом физико-механических показателей и естественной фиброархитектоники нативного сырья. Биосовместимые свойства образцов протеза связки, изготовленных из телячьих сухожилий сгибателей и разгибателей пальцев указанным методом, были оценены на модели гетеротопической имплантации в подкожную жировую клетчатку крысам. Полученные результаты подтвердили перспективность применения данного материала, обработанного предложенным способом, в клинической практике.

Для цитирования: Гурин М.В., Венедиктов А.А., Глумскова Ю.А., Корнеева К.Г. Оценка биосовместимости очищенного говяжьего сухожилия на модели гетеротопической имплантации // Журн. мед.-биол. исследований. 2021. Т. 9, № 3. С. 327–334. DOI: 10.37482/2687-1491-Z070

Ключевые слова

Список литературы

1. Макаров С.А., Сергиенко С.А. Растяжения связок, сухожилий и мышц // РМЖ. 2001. № 23. С. 1046.

2. Климов А.В., Глухов А.А. Повреждения передней крестообразной связки коленного сустава у спортсменов. Факторы риска и основные механизмы получения травмы // NovaInfo. 2018. Т. 1, № 91. С. 139–146.

3. Заяц В.В., Дулаев А.К., Дыдыкин А.В., Ульянченко И.Н., Коломойцев А.В., Ковтун А.В. Анализ эффективности технологий артроскопической пластики передней крестообразной связки коленного сустава // Вестн. хирургии им. И.И. Грекова. 2017. Т. 176, № 2. С. 77–82.

4. Рыбин А.В., Кузнецов И.А., Румакин В.П., Нетылько Г.И., Ломая М.П. Экспериментально-морфологические аспекты несостоятельности сухожильных ауто- и аллотрансплантатов после реконструкции передней крестообразной связки коленного сустава в раннем послеоперационном периоде // Травматология и ортопедия. 2016. Т. 22, № 4. С. 60–75. DOI: 10.21823/2311-2905-2016-22-4-60-75

5. Белов Ю.В., Лысенко А.В., Леднев П.В., Салагаев Г.И. Применение заплаты из децеллюляризированного ксеноперикарда в хирургии брахиоцефальных артерий // Кардиология и сердечно-сосудистая хирургия. 2018. № 2. С. 31–34. DOI: 10.17116/kardio201811231-34

6. Сиваконь С.В., Девин И.В., Сретенский С.В., Чиж А.А., Космынин Д.А. Результаты применения протезов из ксеноперикарда в хирургическом лечении подкожных дегенеративных разрывов ахиллова сухожилия // Соврем. проблемы науки и образования. 2015. № 6. С. 128.

7. Манченко А.А., Михайлова И.П., Сандомирский Б.П. Морфология тканевой реакции у крыс при подкожной имплантации ксеноперикарда и створок аортального клапана свиньи, девитализированных криорадиационным способом // Клітинна та органна трансплантологія. 2016. Т. 4, № 1. С. 30–38.

8. Сергеевичев Д.С., Сергеевичева В.В., Субботовская А.И., Васильева М.Б., Докучаева А.А., Караськов А.М., Козлов В.А. Децеллюляризация как способ предотвращения активации иммунного ответа на аллогенные легочные клапаны сердца // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2013. Т. 8, № 4. С. 55–60.

9. Патент № 2665366 Российская Федерация, МПК A61F 2/08 (2006.01), A61L 27/36 (2006.01), A61L 27/50 (2006.01). Ксеногенные имплантаты мягких тканей и способы изготовления и использования: № 2014150029: заявл. 14.03.2013: опубл. 29.08.2018 / Педросо Д., Эли М. 46 с.

10. Патент № 2607185 Российская Федерация, МПК A61F 2/00 (2006.01). Способ получения ксенотрансплантата для офтальмохирургии: № 2015139247: заявл. 15.09.2015: опубл. 10.01.2017 / Бикбов М.М., Халимов А.Р., Зайнутдинова Г.Х., Кудоярова К.И., Лукьянова Е.Э. 9 с.

11. Isidan A., Liu S., Li P., Lashmet M., Smith L.J., Hara H., Cooper D.K.C., Ekser B. Decellularization Methods for Developing Porcine Corneal Xenografts and Future Perspectives // Xenotransplantations. 2019. Vol. 26, № 6. Art. № e12564. DOI: 10.1111/xen.12564

12. Бритиков Д.В., Чащин И.С., Хугаев Г.А., Бакулева Н.П. Девитализация аллографтов сверхкритическим диоксидом углерода и детергентами. Экспериментальная оценка // Сердечно-сосудистые заболевания. Бюл. НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН. 2019. Т. 20, № 5. С. 402–409. DOI: 10.24022/1810-0694-2019-20-5-402-409

13. Sawada K., Terada D., Yamaoka T., Kitamura S., Fujisato T. Cell Removal with Supercritical Carbon Dioxide for Acellular Artificial Tissue // J. Chem. Technol. Biotechnol. 2008. Vol. 83, № 6. P. 943–949. DOI: 10.1002/jctb.1899

14. Ribeiro N., Soares G.C., Santos-Rosales V., Concheiro A., Alvarez-Lorenzo C., García-González C.A., Oliveira A.L. A New Era for Sterilization Based on Supercritical CO2 Technology // J. Biomed. Mater. Res. B Appl. Biomater. 2020. Vol. 108, № 2. DOI: 10.1002/jbm.b.34398

15. Залепугин Д.Ю., Тилькунова Н.А., Чернышова И.В., Власов М.И. Стерилизация в сверхкритических средах // Сверхкрит. флюиды. Теория и практика. 2015. Т. 10, № 4. С. 11–17.

16. Perrut M. Sterilization and Virus Inactivation by Supercritical Fluids (a Review) // J. Supercrit. Fluids. 2012. Vol. 66. P. 359–371. DOI: 10.1016/j.supflu.2011.07.007